Α humain de facteur de nécrose tumorale (TNF-α) ELISA Kit, 96T

Kit ELISA pour le facteur de nécrose tumorale humaine α (TNF-α)

Types d'échantillons validés:sérum, plasma sanguin, salive, urine et autres tissus apparentés.

À des fins de recherche uniquement, non à des fins de diagnostic.

Le kit ELISA est basé sur le principe de la technique sandwich à double anticorps pour détecter le facteur de nécrose tumorale humaine α ((TNF-α).Utiliser uniquement à des fins de recherche, ne doit pas être utilisé pour le diagnostic médical..

Utilisation prévue

Ce kit est utilisé pour évaluer le facteur de nécrose tumorale α ((TNF-α) dans l' échantillon de sérum, de plasma sanguin et d' autres tissus connexes.

Principe de l'essai

Le kit utilise un test d'immunosorbent lié à l'enzyme à double anticorps sandwich (ELISA) pour évaluer le niveau de facteur de nécrose tumorale humaine α (TNF-α) dans les échantillons.Ajouter le facteur de nécrose tumorale α (TNF-α) à l'anticorps monoclonal Enzyme well qui est pré-enduit avec le facteur de nécrose tumorale humain α (TNF-α) anticorps monoclonal, l' incubation; ensuite, ajouter des anticorps au facteur de nécrose tumorale α (((TNF-α) étiquetés avec de la biotine, et combinés avec la streptavidine-HRP pour former un complexe immunitaire;ensuite effectuer l'incubation et le lavage à nouveau pour enlever l'enzyme non combinéePuis ajouter la solution de chromogène A, B, la couleur du liquide change en bleu, et à l'effet de l'acide, la couleur devient enfin jaune.Le chromat de couleur et la concentration du facteur de nécrose tumorale de la substance humaine (TNF-α) de l'échantillon étaient positivement corrélés..

Matériaux fournis dans le kit d'essai

Matériaux requis mais non fournis

1. incubateur à 37 °C 2. lecteur d'enzyme standard

3- Pipettes de précision et tuyaux jetables 4.

5- Tubes jetables pour la dilution des échantillons 6.

Notes importantes

1Si les plaques enduites d'Enzyme n'ont pas été utilisées après ouverture, la batterie doit être placée dans un endroit où la température ambiante n'est pas suffisante.les autres plaques doivent être conservées dans un sac scellé.

2Pour chaque étape, ajouter l'échantillon avec l'injecteur d'échantillon qui doit être calibré fréquemment, afin d'éviter des tolérances expérimentales inutiles.

3. l'opération doit être effectuée conformément aux instructions strictement et les résultats des essais doivent être basés sur les relevés du lecteur d'enzymes.

4Pour éviter la contamination croisée, il est interdit de réutiliser la tête d'aspiration et la membrane de la plaque d'étanchéité dans vos mains.

5. Tous les échantillons, le tampon de lavage et chaque type de rejet doivent être selon le procédé du matériau infectieux.

6. Les agents inactifs doivent être placés ou recouverts. Ne pas utiliser le réactif avec des lots différents. Et les utiliser avant la date de péremption.

7Le substrat B est sensible à la lumière, une exposition prolongée à la lumière est interdite.

Méthode de lavage

Méthode de lavage manuel:secouez le liquide restant dans les plaques enzymatiques, placez des feuilles de papier sur le banc d'essai et battez fortement les plaques à l'envers.35 ml de solution de lavage après dilution dans le puitsRépétez ce processus selon vos besoins.

Méthode de lavage automatique:s'il existe une machine à laver automatique, elle ne doit être utilisée dans l'essai que lorsque vous connaissez parfaitement sa fonction et ses performances.

Précision

Précision dans l'essai: 3 échantillons présentant des taux de TNF-α humain bas, moyen et élevé ont été testés 20 fois sur une plaque, respectivement.

Précision entre les essais: 3 échantillons présentant des taux faibles, moyens et élevés de TNF-α humain ont été testés sur 3 plaques différentes, 8 réplications dans chaque plaque.

CV ((%) = SD/moyenneX100

Le taux de dépistage de la maladie est supérieur à 10%.

Inter-analyse: CV< 12%

Exigences relatives aux échantillons

1. Impossible de détecter l'échantillon contenant du NaN3, car le NaN3 inhibe l'activité du HRP.

2. extraire le plus tôt possible après la collecte des spécimens et selon la littérature pertinente, et doit être expérimenté le plus tôt possible après l'extraction.l'échantillon peut être conservé à -20 °C pour préserverÉvitez les cycles de congélation et de décongélation répétés.

3. sérum- coagulation à température ambiante 10-20 min, centrifugation 20 min à la vitesse de 2000-3000 tours/min. éliminer le supernatant, si des précipitations sont apparues, centrifugez à nouveau.

4- utilisation plasmatique appropriée EDTA ou plasma citrate comme anticoagulant, mélangez pendant 10 à 20 min, centrifugez pendant 20 min à une vitesse de 2000 à 3000 tr/min. Retirez le supernatant, si des précipitations apparaissent, centrifugez à nouveau.

5. collecte d'urine dans un récipient stérile, centrifugation 20 min à la vitesse de 2000-3000 r.p.m. enlever le surnaturant, si des précipitations sont apparues, centrifugez à nouveau.L'opération de l'hydrothorax et du liquide céphalo-rachidien.

6- culture cellulaire - détection des composants sécrétoires, collecte dans un récipient stérile, centrifugation 20 min à une vitesse de 2000 à 3000 tr/min.Suspension de cellule diluée avec PBS ((PH7).2-7.4), la concentration cellulaire atteint 1 million / ml, cycles de congélation-dégel répétés, dommages aux cellules et libération de composants intracellulaires, centrifugation 20 min à une vitesse de 2000-3000 tr/min.éliminer le surnaturantSi des précipitations apparaissent, centrifugez à nouveau.

7.échantillons de tissus- Après coupure des échantillons, vérifier le poids, ajouter du PBS ((PH7.2-7.4), congeler rapidement avec de l'azote liquide, maintenir les échantillons à 2-8°C après fusion, ajouter du PBS ((PH7.4),Homogénéisés à la main ou à la meuleuse, centrifugez pendant 20 min à une vitesse de 2000-3000 tr/h pour enlever le surnaturant.